方法一：
1. 標本預處理：將1ml EDTA抗凝貯凍血液于室溫解凍后移入5ml離心管中，加入1ml磷酸緩沖鹽溶液（PBS），混勻，3500g離心15min,傾去含裂解紅細胞上清。重復一次。用0.7ml DNA提取液混懸白細胞沉淀，37℃水浴溫育1h。
2. 消化：上述DNA提取液混懸白細胞，37℃水浴溫育1h后，加入1mg/ml蛋白酶K 0.2ml,至終濃度為100-200ug/ml,上下轉動混勻，液體變粘稠。50℃水浴保溫3h，裂解細胞，消化蛋白。保溫過程中，應不時上下轉動幾次，混勻反應液。
3. 酚抽提純化DNA：上述反應液冷卻至室溫后，加入等體積的飽和酚溶液，溫和地上下轉動離心管5-10min，直至水相與酚相混勻成乳狀液。5000g離心15min，用大口吸管小心吸取上層粘稠水相，移至另一離心管中。重復酚抽提一次。加等體積的氯仿﹕異戊醇（24﹕1），上下轉動混勻，5000g離心15min，用大口吸管小心吸取上層粘稠水相，移至另一離心管中。重復一次。
4. 加入1/5體積的3mol/L NaAc及2倍體積的預冷的無水乙醇，室溫下慢慢搖動離心管，即有乳白色云絮狀DNA出現。用玻璃棒小心挑取云絮狀的DNA，轉入另一1.5 ml離心管中，加70%乙醇0.2ml，5000g離心5min洗滌DNA，棄上清，去除殘留的鹽。重復一次。室溫揮發殘留的乙醇，但不要讓DNA完全干燥。加TE液20ul溶解DNA,置于搖床平臺緩慢搖動，DNA完全溶解通常需12-24小時。
5. DNA的濃度測定及純度判定：取DNA溶液用TE液做適量稀釋，以TE液作空白對照，在紫外分光光度計上讀取A260和A280的光密度值。
按下面公式計算濃度： DNA濃度(ug/ul)= A260*50*稀釋倍數/1000
DNA純度的判定： A260/A280 比值應介于1.7-2.0之間。
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方法二：
分別采集外周靜脈血5ml，2%乙二胺四乙酸二鈉(EDTA)抗凝待用(要求采血至分離白細胞之間隔時間在室溫下放置不超過2h，4℃放置不超過5h，以防白細胞自溶)。
采用NaI提取法提取外周血白細胞基因組。
（1）取外周抗凝血（全血）100ul于Ep管中，12000rpm離心12min
（2）棄上清，加雙蒸水200ul溶解，搖勻20s
（3）混勻后加6M NaI溶液200ul，搖勻20s
（4）加氯仿/異戊醇（24：1）400ul，即加即搖，搖勻20s，12000rpm離心12min。
（5）取上層液350ul，加入另一新Ep管中，加0.6倍體積異丙醇，搖勻20s，室溫放置15min，靜置后的反應體系15000rpm離心12min，使沉淀緊貼Ep管壁。
（6）棄異丙醇，加70％乙醇1ml（不振動），15000rpm離心12min。
（7）棄乙醇，敞開Ep管蓋， 烘干（37℃恒溫箱）后，加1xTE溶液30ul，溶解DNA＞12h以上，制成的DNA液-20℃冰箱保存備用。
